Aclimatización de plantas producidas in vitro de papaya, var. 'Maradol Roja'

Víctor Reinaldo Medero Vega, Yanelis Bravo Corrales, Milagros Basail Pérez, Aymé Rayas Cabrera, Jorge López Torres, Arletys Santos Pino, Daniel Rodríguez Pérez, Yoel Beovides García, Marlenis Torres Delgado, Wilfredo Caballero Álvarez, Carmen C. Pons Pérez

Resumen


En papaya (Carica papaya L.), se dispone de protocolos para propagación masiva in vitro, tanto por vía organogénica como por vía embriogénica. Sin embargo, la principal limitante de estos protocolos radica en las grandes pérdidas de las plantas obtenidas in vitro durante la fase de aclimatización. La investigación se realizó en el Laboratorio de Biotecnología del INIVIT, con el objetivo de establecer una metodología para aclimatización de plantas producidas in vitro de la variedad ‘Maradol Roja’. Se estudió el efecto de las cámaras húmedas sobre el porcentaje de supervivencia, logrado con bolsas de nylon transparente. Además, se evaluó la influencia de la altura de las plantas producidas in vitro y el efecto del tiempo de inmersión en una solución de ácido indol butírico (AIB) a una concentración de 2 mg.L-1, sobre la supervivencia. Como resultado se obtuvo una metodología de aclimatización que permitió incrementar los porcentajes de supervivencia de 7,1 % con el método tradicional hasta un 58,5 % cuando se utilizó el cobertor diseñado con una bolsa de nylon transparente y combinado con la altura de la planta producida in vitro. Se alcanzó un 56,6 % de supervivencia cuando se utilizó un tiempo de 25 minutos de inmersión en AIB, con diferencias estadísticas significativas respecto al tratamiento control. En general se determinó que, para logar mayor éxito en la aclimatización de las plantas producidas in vitro en este cultivo, resulta fundamental mantener una alta humedad relativa durante los primeros siete a doce días después del trasplante a condiciones ex vitro.

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Referencias


ANANDAN, R.; S. THIRUGNANAKUMAR; D. SUDHAKAR and P. BALASUBRAMANIAN 2011. In vitro organogenesis and plantlet regeneration of (Carica papaya L.). Journal of Agricultural Technology, 7(5):1339-1348.

BACA, A. 2002. Optimización de la micropropagación in vitro de Carica papaya L. Tesis para optar por el Grado de Ingeniero Agrónomo. Univ. Nacional Agraria La Molina. Lima, Perú. 107 p.

BRAVO, Y. 2012. Micropropagación a partir de embriones cigóticos de la papaya (Carica papaya L.) var. 'Maradol Roja'. Tesis para aspirar al título de Ingeniero Agrónomo. Univ. Centrl de Las Villas (UCLV). Santa Clara, Cuba. 59 p.

CAPLE A.D. and K.T. CHEAH. 2016. Micropropagation of hermaphrodite Carica papaya L. ‘Rainbow’ seedlings via axillary bud pathway. Biotechnology BIO-12. College of Tropical Agriculture and Human Resources (CTAHR), University of Hawaii, pp 1-5p.

DEL SOL, L. 2001. Efficient plant regeneration from somatic embryogenesis in papaya cv. INIVIT-2000. Biotecnología Vegetal, 3:133-215.

DESJARDINS, Y. 1995. Factors affecting CO2 fixation in striving to optimize photoautotrophy in micropropagated plantles. Plant Tissue Culture and Biotechnology, 1(1):13 25.

FLACHOWSKY, H.; C. HÄTTASCH; M. HÖFER; A. PEIL and M.V. HANKE. 2010. Overexpression of leafy in apple leads to a columnar phenotype with shorter internodes. Planta, 231:251-263.

GALLARDO, J.; POSADA, L. y R. GÓMEZ. 2002. Micropropagación del híbrido cubano de Papaya IBP 42-99. Biotecnología Vegetal, 2(4):211-215.

GARCÍA, M.; D. GÁLVEZ; S. RODRÍGUEZ; V. MEDERO; J. LÓPEZ; J. VENTURA; M. CABRERA; A. RAYAS; A. SANTOS y M. BASAIL. 2003. Metodología para la propagación in vitro de la variedad de Papaya ‘Maradol Roja’ a partir de ápices meristemáticos. CD-ROM Memorias de AGROCENTRO 2003. II Conferencia sobre desarrollo Agropecuario y Sostenibilidad. Facultad de Ciencias Agropecuarias UCLV, 17-19 junio 2003. ISBN 959-250-078-9.

GARCÍA, D. 2012. Fluctuación poblacional de áfidos y alternativas para el manejo del Virus de la mancha anular de la papaya en Carica papaya L. Tesis presentada en opción al título académico de Master en Agricultura Sostenible. UCLV. 78p.

HURTADO, O. 2010. Aclimatización y multiplicación vegetativa en casas de cultivo de plantas cultivadas in vitro de Bambusa vulgaris var. vulgaris Schrad. ex Wendl. Tesis en opción al título de Magister Scientiae en Biotecnología Vegetal, IBP-UCLV. 63 p.

JORGE, M.A.; M.T. CANHAO and A.I. Robertson. 2000. Factors affecting the acclimatization of ex vitro cassava in the semiarid regions. Cassava Biotechnology, Proceedings IV International Scientific Meeting Cassava Biotechnology Network, Salvador, Bahia, Brazil, pp. 396-407. Eds L.J.C.B. Carvalho, A.M. Thro and A.D. Vilarinhos. Brasilia: EMBRAPA/CENARGEN/CBN.

LIMA, H. 1991. Resultados obtenidos en las investigaciones de la estación nacional de frutales. Laboratorio de Cultivo in vitro y diagnóstico del Instituto de Investigaciones de cítricos y otros frutales. Laboratorio. Informe para el Ministerio de la Agricultura. La Habana. pp. 15-18.

MARTÍNEZ, R.; H.S. AZPÍROZ; J.L. RODRÍGUEZ; M. CETINA y M.A. GUTIÉRREZ. 2005. Aclimatización de plantas obtenidas in vitro (Eucalyptus Urophylla S.) blake Eucalyptus Ggrandis Hill ex maiden ra ximhai. Universidad Autónoma Indígena de México, 1(3):591-597.

MEDERO, V. 2006. Embriogénesis Somática en Yuca (Manihot esculenta Crantz). Tesis en opción al título de Doctor en Ciencias Agrícolas. Universidad de Ciego de Ávila. 101 p.

MEDERO, V.R.; GARCÍA, M.; BASAIL, M.; GÁLVEZ, D.; RODRÍGUEZ, S.; SANTOS, A.; LÓPEZ, J.; RAYAS, A.; CABRERA, M.; RODRÍGUEZ, G.; PONS, C. y J. GARCÍA. 2011. Empleo del Sistema de Inmersión Temporal para la propagación in vitro de la papaya, var. ‘Maradol Roja’. CD-ROM: Memorias del VIII Congreso Internacional de Biotecnología Vegetal BioVeg 2011. Ciego de Ávila. ISBN: 978-959-16-1286-1.

MEDERO, V.; Y. BRAVO, M. BASAIL, A. RAYAS, J. LÓPEZ, A. SANTOS, S. RODRÍGUEZ, M. TORRES, W. CABALLERO, C. PONS y J. GARCÍA. 2013. Propagación in vitro de la papaya a partir de embriones cigóticos inmaduros. CD Memorias del IV Simposio Internacional de Fruticultura Tropical y Subtropical. Taller de Recursos filogenéticos y mejoramiento por métodos tradicionales y biotecnológicos. (M-13) pp. 101-107.

MINAG. 2018. Instructivo técnico del cultivo de la papaya (Carica papaya L.).

MORÁN, P. 2008. Implementación de técnicas de aclimatización para plantas micropropagadas de vid (Vitis vinifera L.) Pontificia Universidad Católica de Alparaíso.

PALHARES, G.A.; R. RODRÍGUEZ; M. CID; D. PINA y J. GONZÁLEZ. 2004. Efecto de un análogo de brasinosteroides (MH5) en la propagación de Eucalyptus urograndis en biorreactores de inmersión temporal. Cultivos Tropicales, 25(1):39-44.

PATEL, J.R.; R.M. PATEL; R.R. SHAH and K.A. SHINDE. 2010. Proliferation, rooting and acclimatization of micropropagated papaya cv. Red Lady. International Journal of Plant Sciences, Muzaffarnagar, 5(2):459-462.

PAZ, E. 2012. Nueva metodología para la aclimatización de vitroplantas de yuca (Manihot esculenta Crantz) y su respuesta en campo. Tesis para aspirar al título de Ingeniero Agrónomo. UCLV. 43p.

POSADA, L. 2005. Aplicaciones de la Biotecnología en la propagación de la papaya (Carica papaya Lin). Biotecnología Vegetal, 5(2):67-79.

POSADA, L.; R. KOSKY y M. REYES. 2007. Embriogénesis somática en Carica papaya L. var. Maradol Roja. Biotecnología Vegetal, 7(3):131-138.

POSADA, L.; Y. PADRÓN; J. GONZÁLEZ; R. BARBÓN; R. RODRÍGUEZ; O. NORMAN, R.C. RODRÍGUEZ; D. DANIELS and R. GÓMEZ-KOSKY. 2015. Effect of phloroglucinol on rooting and in vitro acclimatization of papaya (Carica papaya L var. Maradol Roja). In Vitro Cell Dev Biol Plant., 52(2):196-203.

POSADA L.; Y. PADRÓN; J. GONZÁLEZ; R. RODRÍGUEZ; R. BARBÓN; R. RODRÍGUEZ; O. NORMAN y R. GÓMEZ-KOSKY. 2016. Efecto del Pectimorf® en el enraizamiento y la aclimatización in vitro de brotes de papaya (Carica papaya L.) cultivar Maradol Roja. Cultivos Tropicales, 37(3):50-59.

POSADA, L.; R. GÓMEZ-KOSKY; Y. PADRÓN; J. GONZÁLEZ y R. RODRÍGUEZ. 2017. Embriogénesis somática en papaya cultivar Maradol Roja una alternativa para la propagación y el mejoramiento genético. Biotecnología Aplicada, 34(3):3501-3504. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/bta/v34n3/bta04317.pdf.

QUIOT, D.L. y J. DOWINEL. 1990. Serological and biological variability of virus isolates related to strains of papaya (Carica papaya L.) ringspot virus. Phytopatology, 80:256-263.

RODRÍGUEZ, A.; L. POSADA; R. GOMÉZ; M. REYES y M. TEJEDA. 2009. Aclimatización de plantas de Carica papaya var. Maradol roja obtenidas por embriogénesis somática. Biotecnología Vegetal, 9(2):91-97.

ROQUE, A.Y. 2006. Obtención de posturas de papaya (Carica papaya L.) cv. ‘Maradol Roja’ por cultivo in vitro de segmentos nodales de plantas jóvenes. Disponible en: http://www.forumcyt.cu/UserFiles/forum/Textos/1050511.pdf

ROQUE, A.Y. y E.H. ARDISANA. 2006. Propagación in vitro de papaya (Carica papaya L.) cv. Maradol Roja: una alternativa para el desarrollo local de las provincias Habaneras. Memorias del I Encuentro Internacional de Desarrollo Agrario y Rural ISBN: 959-16-0280-05.

SOSA, R.F.; M. ORTIZ; S. HERNÁNDEZ; R. ARMAS y P. GUILLEN. 2009. In vitro acclimatization of aseptically cultured plantlets to humidity. J. Amer. Soc. Hort. Sci., 108 (3): 386-389.

SETARGIE, A.; F. MEKBIB and E. ABRAHA. 2015. In vitro propagation of papaya (Carica papaya L.). World Journal of Agricultural Sciences, 11(2):84-88.

WU, K.; S. Zeng; Z. CHEN and J. DUAN. 2012. In vitro mass propagation of hermaphroditic Carica papaya cv. Meizhonghong. Pakistan Journal of Botany, 44(5):1669-1976.


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